ЕФЕКТИВНІСТЬ ТА БЕЗПЕКА АЛОГЕННИХ МЕЗЕНХІМАЛЬНИХ СТОВБУРОВИХ КЛІТИН У ЛІКУВАННІ СЕПСИСУ НА ЕТАПІ ІНТЕНСИВНОЇ ТЕРАПІЇ
DOI:
https://doi.org/10.32782/2411-9164.24.1-6Ключові слова:
сепсис, септичний шок, інтенсивна терапія, мезенхімальні стовбурові клітини пуповини, UC-MSC, імуномодуляція, цитокіни, стовбурові клітини, органопротекціяАнотація
Вступ. Сепсис залишається провідною причиною глобальної летальності, на яку припадає близько 20% усіх смертей у світовій популяції. В Україні показники смертності у відділеннях анестезіології та інтенсивної терапії (ВАІТ) залишаються стабільно високими (40–60%), що корелює з демографічним старінням, високим рівнем коморбідності та змінами в епідеміологічній структурі інфекцій після пандемії COVID-19. Обмежена ефективність стандартних протоколів обумовлює необхідність розробки ад’ювантних методів терапії. Мезенхімальні стовбурові клітини пуповини (UC-MSC) розглядаються як потенційний терапевтичний агент завдяки їхнім імуномодулюючим, антимікробним та регенеративним властивостям, що реалізуються через паракринні механізми впливу на системну запальну відповідь. Мета дослідження. Оцінити ефективність та безпеку алогенних мезенхімальних стовбурових клітин пуповини (UC-MSC) як ад’ювантної терапії для лікування сепсису у пацієнтів відділення інтенсивної терапії, з фокусом на імуномодуляцію, органопротекцію та зниження летальності. Матеріали і методи. Проведено огляд публікацій, баз даних PubMed, Web of Science, Scopus, клінічні реєстри ClinicalTrials.gov за тематикою сепсис, септичний шок де використовувалися в схемі лікування мезенхімальні стовбурові клітини, зокрема UC MSC, доклінічні моделі з використанням МСК/UC MSC; клінічні випробування фаз I–II у людей із сепсисом; огляди та мета аналізи з оцінкою летальності, органної дисфункції, біомаркерів. Результати. Систематизація доклінічних даних (моделі CLP) продемонструвала зниження летальності при застосуванні UC-MSC (OR 0.26) та покращення функціональних показників нирок (креатинін ROM 0.63) і печінки (АЛТ ROM 0.69). Патофізіологічний ефект базується на секреції паракринних факторів (TSG-6, PGE2, IDO), що ініціюють поляризацію макрофагів у протизапальний M2-фенотип та знижують рівні прозапальних цитокінів (TNF-α на 30–60%, IL-6 – ROM 0.67). Доведено наявність прямої антимікробної активності (через пептид LL-37) та посилення фагоцитозу патогенів. Результати клінічних досліджень I фази підтвердили безпеку внутрішньовенних інфузій у дозах до 3х106 МСК/кг. Відзначено статистично значущу редукцію рівнів С-реактивного білка (на ~40% на 8-му добу) та позитивну динаміку прокальцитоніну, що свідчить про обмеження системної запальної відповіді. Висновки. Алогенні пуповинні МСК є патогенетично обґрунтованою та багатообіцяючою ад’ювантною терапією сепсису, але поки що лише на рівні доклінічних моделей і ранніх фаз клінічних випробувань. Основою їх дії є паракринна імуномодуляція: пригнічення прозапальних цитокінів, посилення антизапальної відповіді, підвищення фагоцитозу та органопротекція, що супроводжується зниженням летальності й виразності органної дисфункції в експериментах. Фаза I у людей підтвердила безпеку внутрішньовенного введення UC‑MSC та сприятливу динаміку цитокінів/CRP, однак переконливих даних щодо зниження смертності ще немає, тому застосування слід обмежити рамками клінічних досліджень.
Посилання
World Health Organization. (3 May 2024). Sepsis. https://www.who.int/news-room/factsheets/detail/sepsis
La Via, L., Ferlito, S., Di Modica, M. S., Marino, A., Nunnari, G., Cacopardo, B., Lechien, J. R., Lentini, M., Lavalle, S., Botto, G. C., Buscema, P., Gruppuso, L., Maniaci, A. (2026). The Global Impact of Sepsis: Epidemiology, Recognition, Management, and Health System Challenges. Epidemiologia (Basel). Feb 3;7(1), 20. doi: 10.3390/epidemiologia7010020. PMID: 41718052; PMCID: PMC12921907.
Цзо Тінлань. (2021). Вибір стартової інфузійної терапії для пацієнтів з септичним шоком./автореф. дис. на здобуття наук. ступеня канд. мед. наук : спец. 14.01.30 «Анестезіологія та інтенсивна терапія» / Нац. ун-т охорони здоров’я України ім. П. Л. Шупика МОЗ України. Київ.
Gray, Authia P. et al. Global, regional, and national sepsis incidence and mortality, 1990–2021: a systematic analysis. The Lancet Global Health, Volume 13, Issue 12, e2013–e2026
Hum, C., Tahir, U., Mei, S. H. J., Champagne, J., Fergusson, D. A., Lalu, M., Stewart, D. J., Walley, K., Marshall, J., Dos Santos, C. C., Winston, B. W., Mendelson, A. A., Dave, C., McIntyre, L. (2024). Efficacy and Safety of Umbilical Cord-Derived Mesenchymal Stromal Cell Therapy in Preclinical Models of Sepsis: A Systematic Review and Meta-analysis. Stem Cells Transl Med. Apr 15;13(4), 346–361. doi: 10.1093/stcltm/szae003. PMID: 38381583; PMCID: PMC11016835.
He, Xiao et al. Umbilical cord-derived mesenchymal stem (stromal) cells for treatment of severe sepsis: aphase 1 clinical trial. Translational Research, Volume 199, 52–61
Yang, T., Xu, X., An, J., Li, B., Dou, Z. (2025). Mesenchymal stem cells in sepsis-induced organ dysfunction: mechanisms and therapeutic potential. Stem Cell Res Ther. Nov 5;16(1), 615. doi: 10.1186/s13287-025-04752-1. PMID: 41194123; PMCID: PMC12590784.
Premer, C., Hare, J. M., Yuan, S. Y., Wilson, J. W. (2025). Mesenchymal stem/stromal cells as a therapeutic for sepsis: a review on where do we stand? Stem Cell Res Ther. May 15;16(1), 245. doi: 10.1186/s13287-025-04371-w. PMID: 40375314; PMCID: PMC12082945.
Ф. С. Глумчер, В. В. Чоп’як, В. Ю. Федоров. (2018). Сепсис: патогенез, імунодіагностика та імунотерапія (огляд та власні спостереження). Біль, знеболення та інтенсивна терапія. темат. вип.: «Хірургія, ортопедія, травматологія, інтенсивна терапія». № 3 (33)
Laroye, C., Gibot, S., Huselstein, C., Bensoussan, D. (2020). Mesenchymal stromal cells for sepsis and septic shock: Lessons for treatment of COVID-19. Stem Cells Transl Med. Dec;9(12), 1488–1494. doi: 10.1002/sctm.20-0239. Epub 2020 Aug 18. PMID: 32808462; PMCID: PMC7461462.
Sun, X. Y., Ding, X. F., Liang, H. Y., Zhang, X. J., Liu, S. H., Bing-Han, Duan, X. G., Sun, T. W. (2020). Efficacy of mesenchymal stem cell therapy for sepsis: a meta-analysis of preclinical studies. Stem Cell Res Ther. Jun 3;11(1), 214. doi: 10.1186/s13287-020-01730-7. PMID: 32493435; PMCID: PMC7268531.
Wang, C., Zhao, D., Zheng, L., et al. (2022). Safety and efficacy of human umbilical cord mesenchymal stem cells for the treatment of sepsis induced by pneumonia: study protocol for a single-centre, randomised single-blind parallel group trial. BMJ Open 12:e058444. doi: 10.1136/bmjopen-2021-058444
Bourika, V., Rekoumi, E. A., Giamarellos-Bourboulis, E. J. (2025). Biomarkers to guide sepsis management. Ann Intensive Care. Jul 21;15(1), 103. doi: 10.1186/s13613-025-01524-1. PMID: 40685448; PMCID: PMC12277237.
Lalu, M. M., Sullivan, K. J., Mei, S. H., Moher, D., Straus, A., Fergusson, D. A., Stewart, D. J., Jazi, M., MacLeod, M., Winston, B., Marshall, J., Hutton, B., Walley, K. R., McIntyre, L. (2016). Evaluating mesenchymal stem cell therapy for sepsis with preclinical meta-analyses prior to initiating a first-in-human trial. Elife. Nov 17;5:e17850. doi: 10.7554/eLife.17850. PMID: 27870924; PMCID: PMC5153252.
Xu, X., An, J., Yang, T., Li, B., Dou, Z. (2025). Research progress on the role of mesenchymal stem cells in pyroptosis in sepsis. Stem Cell Res Ther. Dec 7. 17(1), 24. doi: 10.1186/s13287-025-04837-x. PMID: 41354942; PMCID: PMC12797771.
Krasnodembskaya, A., Samarani, G., Song, Y., Zhuo, H., Su, X., Lee, J. W., Gupta, N., Petrini, M., Matthay, M. A. (2012). Human mesenchymal stem cells reduce mortality and bacteremia in gram-negative sepsis in mice in part by enhancing the phagocytic activity of blood monocytes. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. May 15;302(10), L1003-13. doi: 10.1152/ajplung.00180.2011. Epub 2012 Mar 16. PMID: 22427530; PMCID: PMC3362255.
Laroye, C., Lemarié, J., Boufenzer, A., Labroca, P., Cunat, L., Alauzet, C., Groubatch, F., Cailac, C., Jolly, L., Bensoussan, D., Reppel, L., Gibot, S. (2018). Clinical-grade mesenchymal stem cells derived from umbilical cord improve septic shock in pigs. Intensive Care Med Exp. Aug 8. 6(1), 24. doi: 10.1186/s40635-018-0194-1. PMID: 30091119; PMCID: PMC6082751.
Chinnici, C. M., Iannolo, G., Cittadini, E., Carreca, A. P., Nascari, D., Timoneri, F., Bella, M. D., Cuscino, N., Amico, G., Carcione, C., Conaldi, P. G. (2021). Extracellular Vesicle-Derived microRNAs of Human Wharton’s Jelly Mesenchymal Stromal Cells May Activate Endogenous VEGF-A to Promote Angiogenesis. Int J Mol Sci. Feb 19;22(4), 2045. doi: 10.3390/ijms22042045. PMID: 33669517
Gao, L., Zhang, Y., Hu, B., Liu, J., Kong, P, Lou, S, Su, Y, Yang, T., Li, H., Liu, Y., Zhang, C., Gao, L., Zhu, L., Wen, Q., Wang, P., Chen, X., Zhong, J., Zhang, X. (2016). Phase II Multicenter, Randomized, Double-Blind Controlled Study of Efficacy and Safety of Umbilical Cord-Derived Mesenchymal Stromal Cells in the Prophylaxis of Chronic Graft-Versus-Host Disease After HLA-Haploidentical Stem-Cell Transplantation. J Clin Oncol. Aug 20;34(24), 2843–50. doi: 10.1200/JCO.2015.65.3642. Epub 2016 Jul 11. PMID: 27400949.
Johnson, C. L., Soeder, Y., Dahlke, M. H. (2017). Concise Review: Mesenchymal Stromal Cell-Based Approaches for the Treatment of Acute Respiratory Distress and Sepsis Syndromes. Stem Cells Transl Med. Apr;6(4), 1141–1151. doi: 10.1002/sctm.16-0415. Epub 2017 Jan 9. PMID: 28186706; PMCID: PMC5442840.
##submission.downloads##
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія

Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.





